O R é um programa livre multiplataforma para análises estatísticas que pode ser baixado em seu site ou adicionado na lista de repositórios de máquinas linux. Suas possibilidades de aplicação em diversas áreas são praticamente ilimitadas.
Neste blog postarei o resultado de minha experiência em sua utilização nas áreas de dinâmica de populações de peixes, ciência pesqueira e ecologia.
As postagens deste blog se destina, além de mim mesmo, a iniciantes no R e alunos da minha área de atuação.
Aprendi muito em livros e nas listas de discussão R-help e a R_STAT, mas ainda tenho muito pela frente. Agradeço desde já qualquer contribuição.
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segunda-feira, 3 de outubro de 2011

Estimativa da Mortalidade Total (Z) por Curvas de Captura - Composição de Comprimentos


A seguir está o procedimento para o cálculo de Z a partir da composição de comprimentos das capturas. Para aplica-lo é necessário, além dos dados de captura (C) por classe de comprimento (L), é necessário que indiquemos os parâmetros da curva de crescimento de von Bertalanffy (Linf, k e t0).

O comprimento indicado (L1) é o limite inferior da classe. Os parâmetros de crescimento a serem utilizados serão Linf = 460 mm, k = 0,198 / ano e t0 = -0,271 / ano.

L1 C
30 18
60 28
90 43
120 51
150 50
180 42
210 40
240 33
270 29
300 18
330 15
360 8
390 2
420 3
450 1


# importa e visualizadados
dat.CL <- read.delim("clipboard",dec=",")
dat.CL

# entra parâmetros da curva de crescimento
Linf <- 460
k <- 0.198
to <- -0.271

# calcula o intervalo de classe utilizado
IC <- dat.CL[2,1]-dat.CL[1,1]
IC

# estima a idade de quando o espécime entra na classe de comprimento
attach(dat.CL)
dat.CL$t <- to-(1/k)*log(1-L1/Linf)

# calcula o tempo que um espécime fica na classe de comprimento
dat.CL$dt <- (1/k)*log((Linf-L1)/(Linf-(L1+IC)))

# estima a idade média do espécime na classe
dat.CL$tm <- (to-(1/k)*log(1-L1/Linf)+to-(1/k)*log(1-(L1+IC)/Linf))/2

# estima o log da captura por unidade de tempo
dat.CL$cdt <- log(C/dat.CL$dt)
dat.CL
detach(dat.CL)

# desenha o gráfico e indica os pontos selecionados
attach(dat.CL)
par(mar=c(5,5,4,2))
plot(cdt~tm,xlab="idade (anos)",ylab=expression(log(C["L,L+1"] / Delta* t)),
cex.lab=1.5,pch=19,col="blue",xlim=c(0,max(na.omit(tm))*1.1))
# clique no gráfico para selecionar os pontos inicial e final.
# Depois de selecionar os dois pontos dê um clique direito para sair.
idn.CL<-identify(cdt~tm,plot=F)
idn.CL
dat.CLs <- dat.CL[c(idn.CL[1]:idn.CL[2]),]
dat.CLs
points(dat.CLs$tm,dat.CLs$cdt,cex=1.5,col="red")
detach(dat.CL)

# ajusta o modelo linear para o cálculo de Z
attach(dat.CLs)
lm.Zl <- lm(cdt~tm)
summary(lm.Zl)
lines(c(min(tm)-0.5,max(tm)+0.5),
  c(coef(lm.Zl)[1]+coef(lm.Zl)[2]*(min(tm)-0.5),coef(lm.Zl)[1]+coef(lm.Zl)[2]*(max(tm)+0.5)),
  col="red")
detach(dat.CLs)

# calcula Z, seus intervalos de confiança
# Z = -b; % de indivíduos que morrem anualmente = 1-exp(-Z)
Zl <- -coef(lm.Zl)[2]
Zl
-confint(lm.Zl)[2,]

# Mortalidade expressa em porcentagem
1-exp(-Zl)

# Porcentagem de sobreviventes (S)
exp(-Zl)








Estimativa da Mortalidade Total (Z) por Curvas de Captura - Composição de Idades

A mortalidade é um parâmetro importante para a compreensão da dinâmica de uma coorte. Através desta taxa pode-se estimar o número (absoluto ou relativo) de indivíduos que morrem na população em um dado período.

Existem diversos métodos para a estimativa da taxa instantânea de mortalidade total (Z). O detalhamento destes podem ser encontrados em referências como Chapman e Robson (1960), Pauly (1983, 1984a e 1984b), Pauly e Morgan (1987), Gulland e Rosenberg (1992) e Sparre e Venema (1997).

No R há o pacote FSA - Fisheries stock assessment methods, que trás várias funções para o estudo de dinâmica de populações e avaliação de estoques.

O cálculo da taxa de mortalidade total é simples e vale fazê-lo "na mão". Abaixo indico o procedimento para o cálculo de Z a partir de dados de captura (C) na idade (I). Z é uma taxa instantânea. No entanto, pode-se calcular os valores percentuais de mortos e sobreviventes (S) com facilidade.
  
I C
0 1867,1
1 5090,5
2 5304,7
3 2186,6
4 947,5
5 380,7
6 176,8
7 75,3
8 31,6


# importa e visualiza dados
dat.CI <- read.delim("clipboard",dec=",")
dat.CI

# desenha o gráfico e indica os pontos selecionados
attach(dat.CI)
par(mar=c(5,5,4,2))
plot(log(C)~I,xlab="idade (anos)",ylab=expression(log(C["t,t+1"])),
cex.lab=1.5,pch=19,col="blue",ylim=c(0,max(log(C)*1.1)),xlim=c(0,max(I)*1.1))
# clique no gráfico para selecionar os pontos inicial e final.
# Depois de selecionar os dois pontos dê um clique direito para sair.
idn.CI<-identify(log(C)~I,plot=F)
idn.CI
dat.CIs <- dat.CI[c(idn.CI[1]:idn.CI[2]),]
dat.CIs
points(dat.CIs$I,log(dat.CIs$C),cex=1.5,col="red")
detach(dat.CI)

# ajusta o modelo linear para o cálculo de Z
attach(dat.CIs)
lm.Zi <- lm(log(C)~I)
summary(lm.Zi)
lines(c(min(I)-0.5,max(I)+0.5),
  c(coef(lm.Zi)[1]+coef(lm.Zi)[2]*(min(I)-0.5),coef(lm.Zi)[1]+coef(lm.Zi)[2]*(max(I)+0.5)),
  col="red")
detach(dat.CIs)

# calcula Z (
Z = -b) e seus intervalos de confiança
Zi <- -coef(lm.Zi)[2]
Zi
- confint(lm.Zi)[2,]

# Mortalidade expressa em porcentagem
1-exp(-Zi)

# Porcentagem de sobreviventes (S)
exp(-Zi)
  

quinta-feira, 22 de setembro de 2011

Relação comprimeto-peso em peixes

A relação comprimento-peso (comprimento-massa) é utilizada para descrever a variação de peso em função da variação de comprimento, ou seja, para estimar o peso de um peixe a partir de um dado comprimento. Normalmente esta relação é descrita por um modelo de potência, P=a×C^b (veja Sparre e Venema, 1997 item 2.6).
A relação comprimento-peso também é utilizada para indicar a condição física ou higidez do organismo e seu padrão de crescimento como isométrico ou alométrico. Diz-se que o crescimento é isométrico quando o organismo cresçe na mesma taxa em todas as dimensões. Neste caso o valor de "b" será 3. A condição de isometria é um pressuposto para alguns métodos de avaliação de estoque.
A seguir posto uma sequencia para o ajuste dos parâmetros da relação comprimento-peso (a e b) pelos métodos linearizado e não linearizado, para a avaliação da significância da diferença entre os parâmetros ajustados para machos e fêmeas, e para a determinação da significância da diferença do parâmetro "b" do valor 3 (teste de isometria).
O juste linear é realizado com a função ln sobre os dados logaritmizados.  O ajuste não linear é realizado pela função nls. Os intervalos de confiança das estimativas são estimados pela função confint e o R2 do ajuste não linear pela função Rsq.ad do pacote qpcR. A isometria é verificada pelo teste t para a comparação de duas inclinações (Zar, Biostatistical Analysis). A comparação entre os modelos lineares ajustados é realizado através da ANCOVA (Faraway, 2002 pg 160). A comparação dos modelos não lineares é realizada por máxima verossimilhança, adaptado do método proposto por Kimura, 1980. Neste á utilizado a estatística qui-quadrado (pchisq)
No início da sequencia os dados de comprimento e peso de machos e fêmeas são gerados para termos um conjunto de dados para nos permitir seguir o exemplo.
Para fazer gráficos mais elaborados veja o tópico "Gráfico de Dispersão com Boxplots". 

# gera dados (C, P)
# =======================
# rotina para gerar um conjunto de dados
# Ma, Mb, Fa e Fb são os parâmetros do modelo de potência que
# que descrevem a relação comprimento-peso. MC, MP, FC e FP
# são os comprimentos e pesos de machos e fêmeas

Ma <- 2.45E-05
Fa <- 2.45E-05
Mb <- 3.0152
Fb <- 2.9164
MC <- round(rnorm(100,400,70),0)
FC <- round(rnorm(100,300,65),0)
MP <- round((Ma*MC^Mb)+((Ma*MC^Mb)*rnorm(100,0,0.08)),1)
FP <- round((Fa*FC^Fb)+((Fa*FC^Fb)*rnorm(100,0,0.08)),1) 

# prepara conjunto de dados
# =========================
# organiza os dados gerados em um conjunto (data.frame),
# indicando quais dados são de machos e quais são de fêmeas

dat.CPm <- data.frame(MC,MP)
names(dat.CPm)<-c("C","P")
dat.CPf <- data.frame(FC,FP)
names(dat.CPf)<-c("C","P")
dat.CP <- rbind(dat.CPm,dat.CPf)
dat.CP$G<-as.factor(rep(c("M","F"),each=100,1))

# visualiza dados
# ===============

attach(dat.CP)
summary(dat.CP)
boxplot(C~G,ylab="Lt mm")
plot(P~C,subset=G=="M")
plot(P~C,subset=G=="F")
plot(P~C,subset=G=="M",col="blue",ylim=c(0,6000))
points(P~C,subset=G=="F",col="red")

# ajusta curva de potência pelo método de linearização
# ====================================================
# a transformação logarítmica das variáveis P e C é
# aplicadas para a linearização na relação.

lm.CPm <- lm(log(P)~log(C),subset=G=="M")
summary(lm.CPm)
confint(lm.CPm)
lm.CPf <- lm(log(P)~log(C),subset=G=="F")
summary(lm.CPf)
confint(lm.CPf)

plot(log(P)~log(C),subset=G=="M",col="blue",ylim=c(log(35),log(6000)))
points(log(P)~log(C),subset=G=="F",col="red")
abline(lm.CPm,col="blue")
abline(lm.CPf,col="red")

# verifica isometria pelo teste t
# ===============================

tm<-(coef(summary(lm.CPm))[2,1]-3)/coef(summary(lm.CPm))[2,2]
dt(tm,nrow(dat.CP)-2)

tf<-(coef(summary(lm.CPf))[2,1]-3)/coef(summary(lm.CPf))[2,2]
dt(tf,nrow(dat.CP)-2)

# ANCOVA - análise de covariância
# ===============================
 
# testa inclinação
lm.b <- lm(log(P)~log(C)*G)
summary(lm.b)

# testa intercepto
lm.a <- lm(log(P)~log(C)+G)
summary(lm.a)

# ajusta curva de potência pelo método não linear
# ===============================================

require(qpcR)
nls.CPm<-nls(P~a*C^b,subset=G=="M",start=list(a=1E-05,b=3))
summary(nls.CPm)
confint(nls.CPm)
Rsq.ad(nls.CPm)

nls.CPf<-nls(P~a*C^b,subset=G=="F",start=list(a=1E-05,b=3))
summary(nls.CPf)
confint(nls.CPf)
Rsq.ad(nls.CPf)

plot(P~C,subset=G=="M",col="blue",ylim=c(0,6000))
points(P~C,subset=G=="F",col="red")
curve(coef(nls.CPm)[1]*x^coef(nls.CPm)[2], col="blue",add=T)
curve(coef(nls.CPf)[1]*x^coef(nls.CPf)[2], col="red",add=T)

# compara modelos por verossimilhança
# ===================================
# adaptado de Kimura 1980 Likelihood methods for the von Bertalanffy growth curve
 
# número médio de observações
par.NMed <- mean(c(nrow(subset(dat.CP,G=="M")),
nrow(subset(dat.CP,G=="F"))))

# cria objetos com os parâmetros das curvas de machos e fêmeas
par.CPf <- c(coef(nls.CPf),deviance(nls.CPf))
names(par.CPf)<- c("a","b","SSQ")

par.CPm <- c(coef(nls.CPm),deviance(nls.CPm))
names(par.CPm)<- c("a","b","SSQ")

# calcula a soma dos quadrados residual total
par.SSQ <- par.CPm[c("SSQ")]+ par.CPf[c("SSQ")]

par.CPf
par.CPm
par.SSQ

# ajuste do modelo com coef. linear (a) comum
nls.CPa <- nls(P ~ a*C^(ifelse(G=="M",bm,bf)),
start=list(a=1E-05,bm=3,bf=3))
par.CPa <- c(coef(nls.CPa),deviance(nls.CPa))
names(par.CPa)<- c("a","bm","bf","SSQ")

# ajuste do modelo com coef. angular (b) comum
nls.CPb <- nls(P ~ (ifelse(G=="M",am,af))*C^b,
start=list(am=1E-05,af=1E-05,b=3))
par.CPb <- c(coef(nls.CPb),deviance(nls.CPb))
names(par.CPb)<- c("am","af","b","SSQ")

# ajuste do modelo com ambos coef. comuns
nls.CPab <- nls(P ~ a*C^b,
start=list(a=1E-05,b=3))
par.CPab <- c(coef(nls.CPab),deviance(nls.CPab))
names(par.CPab)<- c("a","b","SSQ")

# lista o conjunto de parâmetros calculadas
par.NMed
par.CPf
par.CPm
par.SSQ
par.CPa
par.CPb
par.CPab

# teste Chi2 (Qui quadrado) para coef. linear
par.Chia <- -2*log((par.SSQ/par.CPa[c("SSQ")])^par.NMed)
names(par.Chia) <- "Chi2"
par.Chia # valor calculado de Chi2
1-pchisq(par.Chia, 1) # valor p da estatística Chi2

# teste Chi2 para coef. angular
par.Chib <- -2*log((par.SSQ/par.CPb[c("SSQ")])^par.NMed)
names(par.Chib) <- "Chi2"
par.Chib # valor calculado de Chi2
1-pchisq(par.Chib, 1) # valor p da estatística Chi2

# teste Chi2 para o modelo conjunto
par.Chiab <- -2*log((par.SSQ/par.CPab[c("SSQ")])^par.NMed)
names(par.Chiab) <- "Chi2"
par.Chib # valor calculado de Chi2
1-pchisq(par.Chiab, 2) # valor p da estatística Chi2

terça-feira, 7 de junho de 2011

Ajuste do modelo de von Bertalanffy

O modelo de crescimento de von Bertalanffy é muito utilizado para descrever a variação de comprimento de peixes, moluscos e crustáceos ao longo do tempo.
A seguir apresento um passo-a-passo para ajustar a curva aos dados de comprimento (Lt) na idade (t), analisar os parâmetros e fazer o gráfico.
O ajuste é feito de forma não linear pela função nls,  os intervalos de confiança das estimativas são calculados com a função confint e o coeficiente de determinação (R2) pela função Rsq do pacote qpcR. As funções expression e substitute são utilizadas para escrever as equações no gráfico.


t Lt
1 102,0
2 167,0
3 219,4
4 260,7
5 294,9
6 323,2
7 343,0
8 369,5
9 401,7
10 410,0
 

# carrega pacote para cálculo do R2
library("qpcR")

# importa dados da área de transferência
dat.tL <- read.delim("clipboard",dec=",")
attach(dat.tL)

# ajuste do modelo
vb.pargo <- nls(Lt~Linf*(1-exp(-k*(t-t0))),start=list(Linf=500,k=0.2,t0=0))
summary(vb.pargo)
Formula: Lt ~ Linf * (1 - exp(-k * (t - t0)))

Parameters:
      Estimate Std. Error t value Pr(>|t|)   
Linf 501.51567   19.81444  25.311 3.84e-08 ***
k      0.16185    0.01541  10.504 1.55e-05 ***
t0    -0.46264    0.13937  -3.319   0.0128 * 
---
Signif. codes:  0 ‘***’ 0.001 ‘**’ 0.01 ‘*’ 0.05 ‘.’ 0.1 ‘ ’ 1

Residual standard error: 5.587 on 7 degrees of freedom

Number of iterations to convergence: 5
Achieved convergence tolerance: 5.881e-07

# calcula intervalo de confiança dos parâmetros
confint(vb.pargo)
            2.5%       97.5%
Linf 461.8889677 562.3393409
k      0.1250699   0.1996879
t0    -0.8411141  -0.1621223



1-(deviance(vb.pargo)/((length(Lt)-1)*var(Lt))) # R2 "na mão"
[1] 0.9976615
Rsq(vb.pargo) # R2 pelo pacote qpcR
[1] 0.9976615
Rsq.ad(vb.pargo) # R2 ajustado pelo pacote qpcR
[1] 0.9969934 

# desenha o gráfico. Em Windows substituir ["\U221E"] por [infinity]
plot(Lt~t,xlab="idade (anos)",ylab="comprimento total (mm)",
xlim=range(0,10),ylim=range(0,500),cex.lab=1.2,
main=expression(L[i]==L["\U221E"]*"["*1-e^{-k(t-t[0])}*"]"),cex.main=1.5)
 
#desenha a curva
curve(coef(vb.pargo)[1]*(1-exp(-coef(vb.pargo)[2]*(x-coef(vb.pargo)[3]))),add=T,col="tomato1")
 
# coloca a legenda, deve-se clicar no gráfico para indicar o local da legenda
legend(locator(1),bty="n",legend=substitute(L[i]==Linf%*%"["*1-e^{-k%*%(t-t0)}*"]", list(Linf=round(coef(vb.pargo)[1],1),k=round(coef(vb.pargo)[2],2),t0=-round(coef(vb.pargo)[3],2))),cex=1.5)

detach(dat.tL)